{"id":41,"date":"2026-03-10T09:38:56","date_gmt":"2026-03-10T08:38:56","guid":{"rendered":"https:\/\/blogs.urz.uni-halle.de\/gewaesserlabor\/?page_id=41"},"modified":"2026-03-11T19:04:45","modified_gmt":"2026-03-11T18:04:45","slug":"einzeller","status":"publish","type":"page","link":"https:\/\/blogs.urz.uni-halle.de\/gewaesserlabor\/einzeller\/","title":{"rendered":"Einzeller"},"content":{"rendered":"\n<p>Jetzt liegt der Fokus auf der mikroskopischen Untersuchung der Wasserproben auf Einzeller. Einzellige Organismen sind ein zentraler Bestandteil aquatischer Lebensgemeinschaften. Ihre Zusammensetzung und H\u00e4ufigkeit im \u00d6kosystem kann wichtige Hinweise auf \u00f6kologische Bedingungen im Gew\u00e4sser liefern. Der Schwerpunkt dieser Station liegt auf der Beobachtung, Bestimmung und Dokumentation von Einzellern.<\/p>\n\n\n\n<h4> <strong>Vorbereitung<\/strong> \/ Material<\/h4>\n\n\n\n<p>Du ben\u00f6tigst zum Mikroskopieren:<\/p>\n\n\n\n<ul><li>Lichtmikroskop (100-fache\/ 400-fache Vergr\u00f6\u00dferung)<\/li><li>Objekttr\u00e4ger und Deckgl\u00e4ser<\/li><li>Pipetten<\/li><\/ul>\n\n\n\n<p>Du ben\u00f6tigst zur Probenvorbereitung<\/p>\n\n\n\n<ul><li>Probenflaschen oder Probengl\u00e4ser <\/li><li>Planktonnetz (Maschenweite ca. 20\u201350 \u00b5m)<\/li><li>Becherglas oder kleine Sammelgef\u00e4\u00dfe<\/li><li>Notizbuch oder vorbereiteter Protokollbogen<\/li><li>wasserfester Stift zur Beschriftung der Proben<\/li><li>ggf. Pinzette und kleine L\u00f6ffel f\u00fcr Sedimentproben<\/li><\/ul>\n\n\n\n<p><\/p>\n\n\n\n<h4>Durchf\u00fchrung <\/h4>\n\n\n\n<ol><li>Auswahl der Untersuchungsstellen am Gew\u00e4sser  (z. B. Uferzone, Bereiche mit Wasserpflanzen, freies Wasser, \u2026)<\/li><li>Aussp\u00fclen der Probenflasche mit Gew\u00e4sserwasser zur Enfernung von Fremdstoffen.<\/li><li>Entnahme der Wasserprobe ca. 10\u201330 cm unter der Wasseroberfl\u00e4che und zus\u00e4tzlich von einer Probe aus pflanzenreichen oder leicht schlammigen Bereichen. <\/li><li>Probe in ein sauberes beschriftetes Probenglas \u00fcberf\u00fchren. <\/li><li>Proben lichtgesch\u00fctzt und zeitnah zur Untersuchung (Mikroskop) transportieren.<\/li><\/ol>\n\n\n\n<p><strong>Vorbereitung der Probe f\u00fcr die Mikroskopie<\/strong><\/p>\n\n\n\n<ol><li>Probengef\u00e4\u00df vorsichtig schwenken, damit sich die Organismen gleichm\u00e4\u00dfig verteilen. <\/li><li>Mit einer Pipette einen Tropfen der Wasserprobe entnehmenTropfen auf einen sauberen Objekttr\u00e4ger geben.<\/li><li>Deckglas vorsichtig auflegen und Frischpr\u00e4parat unter dem Mikroskop beobachten \u2014 zun\u00e4chst mit geringer Vergr\u00f6\u00dferung (100-fach); bei Bedarf h\u00f6here Vergr\u00f6\u00dferung (400-fach) einstellen.<\/li><\/ol>\n\n\n\n<p><\/p>\n\n\n\n<p>Der folgende Bestimmungsschl\u00fcssel erm\u00f6glicht eine erste grobe Differenzierung h\u00e4ufiger Einzeller in mitteleurop\u00e4ischen S\u00fc\u00dfgew\u00e4ssern. Er basiert auf mikroskopisch gut erkennbaren Merkmalen wie Bewegungsart, Zellform und Vorhandensein von Chloroplasten. Die beste Untersuchung erfolgt meist bei 100 bis 400-facher Vergr\u00f6\u00dferung im Lichtmikroskop.<\/p>\n\n\n\n<p><\/p>\n\n\n\n<p>Bestimme die beobachteten Einzeller mit Hilfe des folgenden Bestimmungsschl\u00fcssels.<\/p>\n\n\n\n<p><\/p>\n\n\n\n<p><strong>Schritt 1 \u2013 Bewegungsart beobachten<\/strong><\/p>\n\n\n\n<div class=\"wp-block-group\"><div class=\"wp-block-group__inner-container\">\n<ul><li>1a. Zelle bildet Scheinf\u00fc\u00dfchen (Pseudopodien) \u2192 Am\u00f6ben \u2192 gehe zu Schritt 2<\/li><li>1b. Zelle besitzt keine Pseudopodien \u2192 gehe zu Schritt 3<\/li><\/ul>\n<\/div><\/div>\n\n\n\n<p><\/p>\n\n\n\n<p><strong>Schritt 2 \u2013 Form der Am\u00f6be<\/strong><\/p>\n\n\n\n<ul><li>2a. Form stark ver\u00e4nderlich, gro\u00dfe Zelle (bis 700 \u00b5m), sichtbare Nahrungsvakuolen \u2192 <strong>Amoeba proteus<\/strong><\/li><\/ul>\n\n\n\n<p><\/p>\n\n\n\n<p><strong>Schritt 3 \u2013 Fortbewegungsorgan<\/strong><\/p>\n\n\n\n<div class=\"wp-block-group\"><div class=\"wp-block-group__inner-container\">\n<ul><li>3a. Zelle besitzt viele Cilien \u2192 gehe zu Schritt 4<\/li><li>3b. Zelle besitzt Flagellen oder bewegt sich kaum \u2192 gehe zu Schritt 5<\/li><\/ul>\n<\/div><\/div>\n\n\n\n<p><\/p>\n\n\n\n<p><strong>Schritt 4 \u2013 Ciliaten<\/strong><\/p>\n\n\n\n<ul><li>Pantoffelartige Form, Zellmund sichtbar \u2192 <strong>Paramecium caudatum<\/strong><\/li><\/ul>\n\n\n\n<p><strong>Schritt 5 \u2013 Chloroplasten vorhanden?<\/strong><\/p>\n\n\n\n<div class=\"wp-block-group\"><div class=\"wp-block-group__inner-container\">\n<ul><li>5a. Zelle gr\u00fcn gef\u00e4rbt \u2192 gehe zu Schritt 6<\/li><li>5b. keine gr\u00fcne F\u00e4rbung \u2192 andere Protozoen<\/li><\/ul>\n<\/div><\/div>\n\n\n\n<p><\/p>\n\n\n\n<p><strong>Schritt 6 \u2013 Autotrophe Einzeller<\/strong><\/p>\n\n\n\n<div class=\"wp-block-group\"><div class=\"wp-block-group__inner-container\">\n<ul><li>spindelf\u00f6rmig mit Augenfleck \u2192 <strong>Euglena gracilis<\/strong><\/li><li>zwei Flagellen \u2192 <strong>Chlamydomonas reinhardtii<\/strong><\/li><li>Silikatschale \u2192 <strong>Navicula sp<\/strong>. (Gattung der Kiselalgen)<\/li><\/ul>\n<\/div><\/div>\n\n\n\n<p><\/p>\n\n\n\n<p><\/p>\n\n\n\n<p><strong><span style=\"text-decoration: underline\">Aufgabe: <\/span><\/strong><\/p>\n\n\n\n<ol><li>Dokumentiere die gefundenen Einzeller,  ihre gesch\u00e4tzte H\u00e4ufigkeit und Gr\u00f6\u00dfe (falls bestimmbar) tabellarisch. <\/li><li>Fertige eine mikroskopische Zeichnung der Einzeller an und beschrifte alle erkennbaren Strukturen. <\/li><li>Welche Funktion haben die gefundenen Einzeller im \u00d6kosystem Gew\u00e4sser?<\/li><li>Erl\u00e4utere m\u00f6gliche Zusammenh\u00e4nge zwischen den dokumentierten Organismen und den Umweltbedingungen am Untersuchungsort.<\/li><\/ol>\n\n\n\n<p><\/p>\n\n\n\n<p><\/p>\n","protected":false},"excerpt":{"rendered":"<div class=\"entry-summary\">\nJetzt liegt der Fokus auf der mikroskopischen Untersuchung der Wasserproben auf Einzeller. 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